Monografias.com > Sin categoría
Descargar Imprimir Comentar Ver trabajos relacionados

Enfermedades fungosas aéreas del tomate (página 2)



Partes: 1, 2, 3

En las hojas, los síntomas iniciales son lesiones
pequeñas necróticas con centros café claro y
márgenes oscuros que pueden tener un halo amarillo.
Posteriormente se desarrollas lesiones algo redondas de
aproximadamente 1 cm en diámetro con centros hundidos de
color café claro. Las lesiones individuales a menudo se
juntan y atizonan las hojas. Los síntomas también
se presentan en flores, pedúnculos y tallos. En el fruto,
primeramente se observan manchas pequeñas café,
ligeramente hundidas y a medida que la fruta madura y se
desarrolla la enfermedad, las lesiones se vuelven más
largas, más oscuras y con anillos concéntrico,
resultando en áreas grandes profundamente hundidas debido
a la unión de las lesiones. A menudo se observa el
crecimiento gris oscuro a negro del hongo en el centro de las
lesiones más viejas. Los síntomas de la "mancha
anillada" pueden confundirse con la mancha bacteriana y el
tizón temprano, sobre todo en las fases tempranas. Por esa
razón, puede ser necesaria la ayuda del microscopio para
identificar apropiada de la enfermedad (Foto 9).

Desarrollo de la enfermedad

La enfermedad puede extenderse rápidamente bajo
condiciones húmedas calurosas en el invernadero y campo, y
causar destrucción de gran cantidad de follaje.

El patógeno

Corynespora cassiicola (Berk & Curtis) Wei
presenta conidióforos erectos y solitarios, de color
café claro, los cuales miden 205-725 &µ de
longitud por 5-8 &µ de ancho. Las conidias pueden ser
solitarias o en cadena, de forma obclavada a cilíndricas,
rectas o curvadas, subhialinas a café claras, 22-300
&µm de longitud por 5-10 &µ de ancho en la
base, con 7 – 11 pseudoseptas.

Manejo de la enfermedad.

Las recomendaciones son idénticas para el manejo
de la mancha foliar y el tizón temprano. Actualmente el
método de control más efectivo está basado
en la aplicación de fungicidas preventivos en forma
oportuna. Un programa de aspersión que incluya
famoxate, pyraclostrobin, boscalid,
azoxystrobin o Trifloxystrobin puede
proporcionar excelentes resultados para el control de la "mancha
anillada" si se lleva a cabo en rotación con fungicidas
del amplio espectro, como el clorotalonil y mancozeb, para el
manejo integrado de la "mancha anillada".

La reducción de los niveles de humedad en el
invernadero previene la germinación de las esporas
fungosas, ya que los períodos largos de alta humedad
relativa favorecen la enfermedad. La poda apropiada de hojas
ayuda a mejorar la corriente de aire más
rápidamente dentro del follaje y las hojas se secan
más rápido.

Cuadro 10. Productos recomendados para la
mancha anillada.

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azoxystrobin+Clorotalonil
(¿1?)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Bacillus subtilis (SL)

BaciFol, Bio-Logic, Serenade,

4-6 L

excento

Boscalid (SL)

Cabrio, Endura

0.7-0.8 kg

Captafol (SL)

Captafol, Difolatan,

15

Clorotalonil (SL)

Daconil 2787 W75, Cheyene 720, Eco 720,
Clorotalonil 75, Bravo 720

1.5-3.0 kg

5

Tryfloxistrobin (3)

Flint

25-50 g/100 L

Famoxate

FamoxateJ Technical

Folpet (2)

Folpan 80 PH

2.5-3.0 kg

25

Mancozeb (5)

Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ, Funcozeb
800, Dithane M45, Manzate Pro Stick, Mancu

1.0-4.0

4

Pyraclostrobin*

Regnum

0.4 L

Sulfato tribásico de Cu
(SL)

Cuperquimm

2.5-3.0 kg

Excento

Ziram (7)

Ziram ultra, Ziram Granuflo

1.6-2.25 kg

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Cenicilla por
Oidiopsis

Leveillula taurica (Lev.)
Arnaud

(Anamorfo: Oidiopsis taurica
Tepper)

Esta enfermedad se reportó por primera vez en
Sinaloa en el ciclo hortícola 1979-80, causando
daños muy severos en todos los cultivares de tomates
establecidos en la etapa tardía. Hasta la fecha, el agente
causal de la enfermedad se ha observado afectando berenjena,
chile y algunas plantas silvestres. Poco antes, en 1978, se
describió por primera vez en Estados Unidos; pero existen
evidencias de que es un viejo problema fitopatológico en
la región del Mediterráneo, África y Asia;
afecta a tomate, berenjena, chile, papa, zanahoria, cebolla,
alfalfa, alcachofa y algunas especies de leguminosas,
malváceas y euforbiáceas.

Síntomas

Los primeros síntomas se manifiestan como manchas
de color verde amarillento por el haz de las hojas,
después la parte central de las lesiones se deshidrata y
se torna de color café; las lesiones se pueden unir y
así afectar a las hojas completas, las que al secarse no
se caen, sino que permanecen adheridas a los tallos; por el
envés las lesione exhiben vellosidades de color blanco, a
menudo difíciles de observar a simple vista (Foto 10-A, B,
C, D, E). Cuando la enfermedad es muy severa se observa una
deshidratación parcial o casi completa de las hojas en
forma ascendente, lo que trae como consecuencia un debilitamiento
general de la planta, así como una drástica
reducción de la producción, frutos pequeños
y frutos quemados por el sol.

Agente causal

El hongo causante de esta enfermedad se denomina
Leveillula taurica (Lev.) Arnaud en su fase sexual, y
Odiopsis taurica Tepper en su estado conidial (Foto
10-F, G, H). El patógeno es parásito obligado,
produce micelio endofítico, forma conidióforos
septados, generalmente simples que salen a través de
estomas, aunque ocasionalmente se han detectado en grupos de dos
o tres, los conidios son unicelulares, hialinos, en forma de
barril o piriformes.

Epidemiología

La temperatura alrededor de los 25º C y humedad
relativa del 50-75% favorece el desarrollo de esta enfermedad.
Las altas temperaturas y la humedad excesiva frenan el desarrollo
del hongo y la germinación de los conidios.

Control

Al existir ambiente seco y cálido se recomienda
iniciar un programa de aplicaciones de los productos mencionados
en el Cuadro siguiente, pero los de mayor eficacia son
azoxystrobin, myclobutanil y trifloxystrobin.

Cuadro 11. Productos recomendados para la
cenicilla por Oidiopsis

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azufre elemental (SL)

Pensul, Sultron 725, Kumulus DF, Flwaz 725
L

2.5-3.0 L

Excento

Azoxystrobin+Clorotalonil (1)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Bacillus pumilus (SL)

Sonata Aso

3.0-6.0 L

Bacillus subtilis (SL)

AgroBacilo, BaciFol, Probacil,
Bio-Logic, Serenade,

4-6 L

excento

Boscalid (SL)

Cabrio

0.7-0.8 kg

Difenoconazole (14)

Score

0.5

0.6

Myclobutanil (1)

Rally 40 W

114-228 g

0.3

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Cenicilla por
Oidium

Oidium neolycopersici Kiss el
al

Oidium lycopersici Mieslerova &
Lebeda

(ex Oidium lycopersicum Cooke &
Massee)

La cenicilla del tomate (Oidium neolycopersici)
fue registrada por primera vez en 1986 en los Países
Bajos. Desde entonces, se ha observado regularmente que causa
infecciones espontáneas en hojas de tomates desarrollados
en invernaderos en muchos países europeos, los estados
Unidos y Canadá. En febrero de 2001 se observó por
primera vez en México (Culiacán, Sinaloa), atacando
plantas de invernadero.

Síntomas

La cenicilla del tomate ataca preferentemente las hojas,
las cuales se cubren por la parte superior de unas manchas
blancas, polvorientas, circulares que rápidamente
confluyen entre ellas. Los pecíolos y los tallos no se han
observado que sean atacados (Foto 11-A, B, C).

Agente causal

Oidium neolycopersici, en tomate, forma
conidias solitarias, pero en ambiente de alta humedad relativa se
pueden presentar pseudocadenas de 2-6 conidias sobre
conidióforos no ramificados (Foto 11-D) y se encuentra
diseminada en Europa, Norte y Sur América, y Asia.
Oidium lycopersici siempre forma conidias en cadenas y
se encuentra solamente en Australia.

El micelio es superficial con hifas hialinas, 5 a 7 ?.
Los cleistotecios no han sido encontrados (fase sexual). Los
conidióforos son erectos no ramificados. Las conidias son
elipsoides-ovoides o en forma de barril y le faltan los cuerpos
fibrosin; el tamaño y número de conidias por
conidióforo varía entre hospedantes. Las conidias
en tabaco, berenjena y chichiquelite (Solanum
nodiflorum
) promedian 37.8 por 19.1 ?, en papa 32.4 por
16.6? y en tomate 33.6 por 18.2 ?????????a?????????.

El microscopio de barrido reveló que la
superficie de la conidia es lisa a ligeramente rugosa y que los
apresorios son lobulados a multilobulados (raramente en forma de
pera) y se fijan al hospedante por medio de un cojinete
muscilaginoso de material extracelular.

El hongo es un parásito obligado y hay diferentes
formas especiales, ya que algunos aislamientos pueden atacar
pepino y tabaco. Similarmente, algunos genotipos de
Lycopersicon spp. muestran reacciones diferenciales con
aislamientos del patógeno, indicando la existencia de
diferentes razas fisiológicas. Este patógeno
está estrechamente relacionado a Erysiphe
aquilegiae
var. ranunculi.

Epidemiología

El hongo ataca a plantas de diferentes edades en
condiciones de invernadero y de campo, y sobrevive en forma de
micelio en diferentes hospedantes. Las conidias germinan sobre la
superficie de las hojas y lanzan haustorios al interior de las
células epidérmicas; el micelio se desarrolla
externamente. La humedad relativa alta disminuye la severidad de
la enfermedad en invernadero. La enfermedad es más
agresiva a temperatura de 24-28 °C y 80-86% de humedad
relativa y progresivamente disminuye a medida que la humedad se
incrementa dejando de presentarse cuando ésta es de
95%.

Macroscópicamente no se ha visto desarrollo del
hongo en chile dulce (Capsicum annuum), lechuga, petunia
(Petunia spp.) y muchas especies de leguminosas
(Lupinus albus, L. luteus, L. mutabilis, Phaseolus
vulgaris, Vicia faba, Vigna radiata, V. unguiculata
). Trazas
de infección han sido ocasionalmente observadas en
melón (Cucumis melo), pepino (Cucumis
sativus
), calabacita (Cucurbita pepo),
chícharo (Pisum sativum) y Solanum
dulcamara
. La berenjena (Solanum melongena),
chícharo, la papa cultivada (Solanum tuberosum) y
tres especies silvestres de papa (Solanum albicans, S. acaule
y S. mochiquense
) fueron las más infectadas en
comparación con melón, pepino, calabacita,
dulcamara, pero el hongo no pudo ser mantenido en estos
hospedantes. Todas las variedades de tabaco (Nicotiana
tabacum
) fueron tan susceptibles a O.
neolycopersici
como el tomate (Lycopersicon
esculentum
cv. Moneymaker), sugiriendo que el tabaco es un
hospedante alternativo. El toloache (Datura stramonium),
Nicotiana rustica, chichiquelite (Solanum
nodiflorum
), Sonchus oleraceus, Rumex crispus y
Oenothera lutea.

La resistencia en especies silvestres de
Lycopersicon fue dominante, pero controlada por
diferente número de genes dependiendo de la fuente de
resistencia. Dos genes de dominancia incompleta controlan la
resistencia en L. hirsutum, pero un gen mayor tiene una
más fuerte expresión que el gen segundo menor.
L. pennellii lleva tres genes dominantes acumulativos.
La resistencia de L. chilense está gobernada por
un gen parcialmente dominante que es menos efectivo que el gen de
resistencia de L. hirsutum.

Control

El control se basa principalmente en la
aplicación de fungicidas. Los siguientes fungicidas son
recomendados, pero azoxystobin, myclobutanil y trifloxystrobin
son los más efectivos.

Cuadro 12. Productos recomendados para la
cenicilla por Oidium

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Ampelomyces quisqualis aislamiento
M-10

AQ10 Biofungicide (Ecogen)

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azufre elemental (SL)

Pensul, Sultron 725, Kumulus DF, Flwaz 725
L

2.5-3.0 L

Excento

Azoxystrobin+Clorotalonil (1)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Bacillus pumilus (SL)

Sonata Aso

3.0-6.0 L

Bacillus subtilis (SL)

AgroBacilo, BaciFol, Probacil, Bio-Logic,
Serenade,

4-6 L

excento

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

Boscalid (SL)

Cabrio

0.7-0.8 kg

Difenoconazole (14)

Score

0.5

0.6

Myclobutanil (1)

Rally 40 W

114-228 g

0.3

Pyraclostrobin*

Regnum

0.4 L

Tiofanato Metílico (SL)

Cercobin M

0.7-1.0

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Otros ingredientes activos eficaces, sin registro,
incluyen bitertanol, bupirimate, carbendazim, fenarimol,
pyrazophos, thiabendazol, triforine, quinoxyfen (la Fortaleza, de
DowAgrosciences) que se conoce para prevenir la infección
por otros mohos polvorientos.

Control Biológico. Una último área
que puede desarrollarse en los próximos años es el
uso de biológico o control integrado para O.
neolycopersici
. Se conocen varios micoparásitos con
actividad contra cenicillas, incluyendo Ampelomyces
quisqualis, Sporothrix flocculosa, Stephanoascus rugulosus,
Tilletiopsis
spp y Verticillium lecanii y hay
potencial para combinar éstos con aspersiones foliares con
sales de fosfato y potasio, actuando ambos a través de
efectos directos en el patógeno y la resistencia inducido
en la planta. Se ha demostrado que las aspersiones foliares de
Sporothrix flocculosa reducen el desarrollo de
O. neolycopersici en tomate en invernadero y
esto podría ser útil para el control sustentable de
este patógena.

Mancha
Gris

Stemphylium floridanum Hannon &
Weber

Stemphylium solani Weber

Stemphylium botryosum f. sp.
lycopersici Rotem, Cohen & Wahl

(Teleomorfo: Pleospora tarda E.
Simmons)

La mancha gris se ha observado atacando, por orden
cronológico, al tomate cherry (S.
solani
), tomate bola (probablemente S. botryosum) y
tomate saladette (S. floridanum). La enfermedad es
importante de acuerdo con las variedades que prevalezcan en la
región. En los años 70´s la enfermedad fue
muy importante en tomate cherry y en los años 80´s
en tomate saladette y bola. Esta enfermedad fúngica
adquirió relevancia, en 1986-88, por su agresividad en
plántulas de charolas en invernaderos.

Síntomas

La enfermedad se presenta en forma de lesiones
principalmente, pero ocasionalmente éstas pueden ocurrir
en los tallos, pecíolos y sépalos (Foto 12). Los
frutos no son afectados. Las lesiones foliares en un principio
son pequeñas de 1 a 2 mm en diámetro, más o
menos circulares, café cremosas, las cuales se pueden
observar fácilmente contra la luz. Con la edad, las
lesiones se alargan y pueden medir hasta 4 mm o más en
diámetro. El centro de las lesiones se vuelve de color
pajizo o café claro, mientras que los bordes son de color
café oscuro o negro y rodeado por un halo
clorótico. El centro de las lesiones se desprende
fácilmente. En infecciones severas, las lesiones se juntan
y las hojas se desprenden. En los tallos y pecíolos, las
lesiones son alargadas o circulares, de 2 a 10 mm en longitud y
de 1 a 4 mm de diámetro, respectivamente, y ligeramente
hundidas. Los síntomas son muy similares a los causados
por Stemphylium solani Weber en tomate cherry,
el cual en la actualidad ya no se presenta, probablemente debido
a la ausencia de variedades susceptibles.

Agente causal

Stemphylium floridanum Hannon & Weber forma
conidios cónicos en el ápice y redondeados en la
base, con hasta 8 septas transversales y varias longitudinales,
generalmente constreñidos en tres septas transversales,
color café, lisos o finamente verrugosos, mayormente de
45-60 x 16 ? (relación 3:1). Los conidióforos son
café claro, de 90 a 220 ? de longitud, de 6 a 7 ? de
espesor y con hinchamientos. El hongo produce micelio gris
fieltroso, ligeramente realzado y forma un pigmento rojizo en
medio de cultivo Papa Dextrosa Agar. El hongo se desarrolla bien
en PDA y Jugo V-8 Agar, pero la esporulación es escasa en
PDA y abundante en Jugo V-8 Agar.

S. solani Weber tiene conidias oblongas,
puntiagudas en el ápice y redondeadas en la base;
muriformes, con tres a seis septas transversales y varias
longitudinales; constreñidas en el septo medio
únicamente, café doradas, lisas ó finamente
verrugosas, 35-55 x 18-25? (relación largo-ancho 2:1).
Conidióforos café claros hasta 200? de longitud,
4-7? de espesor y con hinchamientos en los nudos de 8-10? de
diámetro.

Stemphylium botryosum Wallroth presenta
conidias oblongas, muriformes, de color marrón oscuro y
paredes verrugosas, con tres septos transversales, con
constricción en el septo central, tamaño promedio
de 33,18 ± 3,29 x 20,62 ± 2,44 &µm y una
relación largo:ancho de 1:1,6, con proliferación a
través de un poro en el ápice del
conidióforo. Los conidióforos son simples, de color
marrón, rectos o ligeramente inclinados, con
proliferación recurrente, paredes lisas excepto en la
parte apical que es abultada y con paredes verrugosas.

Epidemiología

S. floridanum se ha encontrado que afecta a
tomate tipo saladette y S. solani a tomate
cherry. Ambos especies de Stemphylium son muy
agresivas de noviembre a marzo, cuando el cultivo está en
plena producción. Durante esta época son frecuentes
las neblinas por la noche y parte del día, y las
temperaturas fluctúan entre 12 y 28 ºC. En cultivos
tardíos, cuando la temperatura es más alta, la
enfermedad no es agresiva. En ocasiones la enfermedad ha atacado
a plántulas de invernadero en octubre, durante periodos
lluviosos. La enfermedad es favorecida cuando existen condiciones
frescas y ambiente húmedo; ésta también
puede convertirse en problema en zonas áridas, siempre y
cuando existan rocíos en periodos prolongados, o cuando se
usa el sistema de riego por aspersión. La enfermedad se
agrava en ambiente húmedo, a partir del 70% de humedad
relativa, el óptimo es entre 80 y 100%, y temperaturas
comprendidas entre 10 a 30 ºC, con el óptimo entre 24
y 26 ºC. Es una enfermedad que se propaga por el viento y
penetra por los estomas. El patógeno puede sobrevivir por
largo tiempo en los residuos de plantas enfermas. En algunas
regiones se ha demostrado que también puede hacerlo sobre
malezas. Los conidios pueden ser fácilmente dispersados
por el viento y el salpique del agua de lluvia

Control

El mejor control es el uso de variedades
resistentes/tolerantes (Anexo 1, 2). Las aspersiones semanales de
clorotalonil y azoxystrobin, alternados, dan muy buenos
resultados. Los siguientes fungicidas son
recomendadas:

Cuadro 13. Productos recomendados para la
mancha gris

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azoxystrobin+Clorotalonil
(¿1?)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Captafol (SL)

Captafol, Difolatan, Quifolatan 50 PH

1.0-3.0 kg

15

Clorotalonil (SL)

Daconil 2787 W75, Cheyene 720, Eco 720,
Clorotalonil 75, Bravo 720

1.5-3.0 kg

5

Mefenoxam (4%)+clorotalonil (725)
(7)

Ridomil Gold Bravo SC, Blason
Ultra

2.5-3.0

0.5+5-0

Mefenoxam+Mancozebl (7)

Ridomil Gold MZ 68 WG

2.5-3.0 kg

0.5+4.0

Oxicloruro de cobre (SL)

Cupravit, Cupertron, Mixcu

2.0-4.0 kg

Excento

Oxicloruro de cobre 39%+ Mancozeb 30%
(5)

Cupravit Mix

Oxido cuproso (SL)

Oxido cuproso

0.8-1.2 kg

Excento

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Moho de la
Hoja

Fulvia fulva (Cooke) Ciferri

(ex Cladosporium fulvum
Cooke)

Esta enfermedad está distribuida ampliamente en
las regiones productoras de tomate, y puede ser más severa
en los países donde se produce esta hortaliza bajo
condiciones de invernadero. En Sinaloa, la incidencia del moho de
la hoja es irregular: existen años en que es leve; sin
embargo, su severidad alcanza niveles epifíticos cuando
existen las condiciones óptimas para su
desarrollo.

Síntomas

La enfermedad infecta principalmente las hojas, donde se
observan, por el haz, pequeñas manchas pálidas o
ligeramente amarillas, las cuales, al crecer se tornan de color
café en el centro (Foto 13-A, F); estas lesiones, por el
envés se cubren de pequeños filamentos de color
sucio, al principio, y al paso del tiempo se tornan de color gris
o café oscuro a manera de terciopelo (Foto 13-B, C, D, E).
Aunque no es muy común, la enfermedad se puede presentar
en tallos tiernos, pedúnculo y botones florales; bajo
condiciones de alta incidencia, el follaje se deshidrata por
completo.

Agente causal

El patógeno responsable del problema es el hongo
Fulvia fulva (Cooke) Ciferri (Cladosporium
fulvum
Cooke). En forma característica este hongo
produce conidióforos libres oscuros y ramificados; los
conidios, son oscuros con una o dos células de forma
ovoide, cilíndricos irregulares. La infección se
efectúa cuando los conidios germinan y penetran a
través de los estomas.

Epidemiología

El patógeno se disemina por medio del viento. La
enfermedad se desarrolla mejor cuando la temperatura
óptima oscila entre 18 y 27 ºC y una humedad relativa
superior al 80%. Es notable que las plantas después de la
floración sean muy susceptibles a la
enfermedad.

Control

El uso de variedades resistente/tolerantes es la medida
más económica y efectiva para el control de la
enfermedad (Anexo 1, 2). Sólo puede ser prevenida mediante
la aplicación eficiente y oportuna de fungicidas, entre
los que sobresalen por su eficacia los siguientes
productos:

Cuadro 14. Productos recomendados para el
moho de la hoja

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azoxystrobin+Clorotalonil
(¿1?)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

5

Captafol (SL)

Captafol, Difolatan, Quifolatan 50 PH

1.0-3.0 kg

15

Clorotalonil (SL)

Daconil 2787 W75, Cheyene 720, Eco 720,
Clorotalonil 75, Bravo 720

1.5-3.0 kg

5

Mancozeb (5)

Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ, Funcozeb
800, Dithane M45, Manzate Pro Stick, Mancu

1.0-4.0

4

Oxicloruro de cobre (SL)

Cupravit, Cupertron, Mixcu

2.0-4.0 kg

Excento

Oxicloruro de cobre 39%+ Mancozeb 30%
(5)

Cupravit Mix

T. harzianum

F-Stop (Eastman Kodak), Supresivit (Borregaard Bio
Plant) *

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Moho Gris y Mancha
Fantasma

Botrytis cinerea Pers

[Teleomorfo: Botryotinia fuckeliana (De
Bary) Whetzel]

El moho gris y la mancha fantasma son causadas por
Botrytis cinerea Pers. Esta enfermedad que ataca a los
tallos, hojas y frutos es encontrada en invernaderos, casasombras
y campo abierto cuando la humedad relativa es alta. Las plantas
son más susceptibles en la medida que se aproximan a la
madurez. Las plantas grandes que son podadas manualmente y tienen
follaje abundante parecen ser más severamente infectadas.
En cultivos de invernadero, donde la intensidad luminosa es baja
y la humedad relativa alcanza de 95 a 100% de noche;
Botrytis con frecuencia afecta todas las partes de la
planta. Una vez que llega a establecerse en los tejidos
moribundos, el hongo invade el tallo, frecuentemente
rodeándolo y matando la planta. El hongo ocurre a nivel
mundial y causa diferentes tipos de daños en la
mayoría de las plantas hortícolas y de
flores.

Síntomas

Los daños empiezan en las hojas viejas y en las
heridas producidas por la poda. En las hojas se observan manchas
oscuras que se recubren de un crecimiento fungoso de color
grisáceo. Estos daños se localizan, principalmente,
en el borde de las hojas. Las hojas acaban por marchitarse. En la
medida que esto ocurre, el hongo progresa hacia el tallo y
produce lesiones elípticas de color café con
anillos concéntricos que a menudo lo rodean, y acaban por
marchitar el brote en que se encuentra, por encima de la zona
dañada. Los hongos secundarios pueden entrar y causar que
las lesiones se tornen negras. En los frutos se producen
pudriciones y lesiones grisáceas que pueden llegar a
afectar gran parte de los mismos. Un crecimiento gris más
oscuro de Botrytis se presenta posteriormente sobre la
superficie de los frutos: quedan blandos, acuosos y oscuros. Los
frutos se deprecian y no son comerciales (Foto 14-A, B, C y
D).

Otro síntoma llamado "mancha fantasma" (Foto 15)
algunas veces se desarrolla en frutos verdes de tomate en
invernaderos o durante períodos húmedos a campo
abierto. Las esporas de Botrytis germinan sobre los
frutos bajo condiciones frías y húmedas; Los tubos
germinativos penetran la epidermis creando un punto
necrótico café en el centro de un anillo de 0.5 cm.
Si el fruto es luego expuesto a un ambiente soleado y caliente,
el hongo muere, y la "mancha fantasma" aparece. La
pudrición no se desarrolla.

Agente causal

Botrytis cinerea Pers es el estado conidial de
Sclerotinia fuckeliana, forma conidióforos largos
(2 mm), delgados (16-30?), determinados, hialinos o pigmentados,
ramificados irregularmente en la porción más alta,
células apicales alargadas o redondeadas, llevando grupos
de conidias simultáneamente en dientecillos cortos;
conidias (botrioblastosporas) hialinas o grises en masa,
unicelulares, ovoides, de 6-18 x 4-11? (principalmente 8-14 x
6-9?); de manera frecuente pueden presentarse esclerocios negros
de forma irregular, los cuales son más delgados y
pequeños que los de S. sclerotiorum (Foto 14-E,
F). La producción, forma y tamaño de éstos
son extremadamente variables; en medio de cultivo algunas cepas
no los forman y otros los producen abundantemente.

Epidemiología

La enfermedad se presenta cuando existe exceso de
humedad, densas plantaciones y la falta de ventilación.
Todas las partes aéreas son las más afectadas.
Botrytis parásita únicamente plantas
débiles. Puede haber invasión en las hojas viejas o
en las heridas causadas por la poda. El viento desprende y
transporta las esporas a grandes distancia. Cuando las esporas
aterrizan en tejidos húmedos, germinan rápidamente
y entran a través de heridas. La penetración de
tejido intacto es rara.

La humedad relativa debe estar arriba de 90% para la
germinación. Las áreas donde las neblinas y los
rocíos persisten son más ideales que donde las
lluvias fuertes son comunes. La temperatura óptima para el
desarrollo de Botrytis está entre 20 y 25 °C.
La infección es rara arriba de 25 °C; sin embargo, los
frutos infectados almacenados pueden pudrirse a temperaturas tan
bajas como 0 °C.

Esclerocios negros aplanados pueden formarse sobre o
dentro del tejido enfermo. Los esclerocios pueden aguantar largos
períodos fríos o sequía. Cuando las
condiciones de temperatura y humedad son favorables, los
esclerocios germinan produciendo hebras miceliales, o raramente,
apotecios, los cuerpos fructíferos sexuales.

Control

Cultural. No hay resistencia en los cultivares
de tomate B. cinerea. En operaciones de invernaderos, el
control eficaz puede lograrse previniendo las condiciones
favorables (humedad relativa alta y temperaturas frías),
por espaciamiento adecuado de las plantas y podando para promover
la ventilación, por el manejo cuidadoso para evitar
heridas, y quitando las fuentes de inoculo por medio del
saneamiento adecuado de la planta.

Fungicidas. La mayoría de los fungicidas
registrado para uso en tomate son preventivos y no suprimen las
infecciones ya establecidas. Debido a esto, el cultivo debe
tratarse antes de que ocurran las infecciones y sobre todo cuando
el medio ambiente es frío y húmedo. El uso repetido
de benomil (Benlate) puede producir el desarrollo de cepas
resistentes de Botrytis, haciendo a este fungicida
ineficaz así como también a todos los
benzimidazoles (tiofanato-metil, tiabendazol, y carbendazim
debido a la resistencia cruzada). Algunas evidencias sugieren que
alternando benomil con otros materiales registrados puedan
retardar el aumento de las cepas resistentes a
benomil.

Las aplicaciones de los siguientes productos son
recomendadas:

Cuadro 15. Productos recomendados para el
moho gris

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin+Clorotalonil
(¿1?)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

5

Candida oleophila
I-182

Aspire (Ecogen)

Cyprodinil+Fludioxonil

Switch 62.5 WG

1.0 kg

Dicloran

Botran

4-5 kg

Fenhexamid (SL)

Elevat

0.2-0.3 kg/100L

Mefenoxam (4%)+clorotalonil (725)
(7)

Ridomil Gold Bravo SC,
Blason

2.5-3.0

0.5+5-0

Gliocladium catenulatum

Primastop (Kemira Agro Oy)

Mefenoxam+Mancozebl (7)

Ridomil Gold MZ 68 WG

2.5-3.0 kg

0.5+4.0

Streptomyces griseoviridis
K61

Mycostop (Kemira Agro Oy)

Trichoderma
harzianum

F-Stop (Eastman Kodak), Supresivit
(Borregaard Bio Plant) *

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Mancha Foliar por
Pseudocercospora

Pseudocercospora fuligena (Roldan)
Deighton

(ex Cercospora fuligena
Roldan)

La mancha foliar por Pseudocercospora y el agente causal
fueron primeramente descritos en 1938 en las Filipinas; la misma
enfermedad pudo haber sido observada en 1931. Desde entonces, la
mancha foliar por Pseudocercospora ha sido reportada en
Japón, India, Malasia, y en 1974 en Florida. En
Culiacán, Sinaloa, México fue observada en 2001 por
primera vez. La enfermedad parece ser favorecida por condiciones
ambientales tropicales y subtropicales.

Síntomas

Los síntomas iniciales son áreas
cloróticas tenues hundidas con márgenes indefinidos
(Foto 16-A, B, C, D); las áreas infectadas llegan a
necrosarse y tienen un halo descolorado indefinido sobre ambas
superficies foliares; puede ocurrir defoliación. El hongo
se desarrolla en la superficie inferior de las hojas, en forma
dispersa o en áreas angulares delimitadas por las
nervaduras de las hojas. En la parte superior correspondiente, la
superficie foliar más tarde se vuelve amarilla y luego
café; alrededor de 14 días después de la
inoculación, las lesiones tenues tienen un halo
descolorado indefinido sobre ambas superficies inferior y
superior de las hojas. Un desarrollo similar aterciopelo puede
ocurrir sobre los pecíolos y tallos suculentos
jóvenes, pero no se ha reportado sobre frutos.

Agente causal

Pseudocercospora fuligena Roldan, sobre las
lesiones, se producen conidióforos principalmente sobre la
superficie inferior de las hojas; los conidióforos se
producen en fascículos, de 2 a 7 o muy densos, café
a oliváceos, más oscuros hacia la región de
la base, solitarios, sin ramificaciones, ligeramente geniculados,
finamente equinulados o lisos, septados, cicatrices conidiales
engrosadas, 16-70 x 3.5-5?. Conidias subhialinas,
obclavadas-cilíndricas, base truncada con hilio engrosado,
ápice redondeado, mayormente rectas, pero ocasionalmente
curvada, claramente multiseptadas, 15-120 x 3.5? (Foto 16-E,
F).

Ciclo de la enfermedad

Pseudocercospora fuligena probablemente
sobrevive en restos de plantas infectadas y produce esporas sobre
estos residuos al inicio de la próxima temporada. Las
esporas pueden ser salpicadas por la lluvia, lavadas por
corrientes de agua, y acarreadas por los trabajadores en sus
ropas, herramientas e implementos. Las esporas sobre la
superficie de las hojas del tomate germinan en 5 a 10 horas: los
tubos germinativos resultantes penetran a través de
estomas dentro de alrededor de 24 a 70 horas. El hongo se
desarrolla mejor a 27 °C. Los síntomas pueden aparecer
en 4 a 6 días después de la inoculación;
pronto nuevas conidias se forman sobre las lesiones foliares y
están disponibles para el inicio de ciclos
secundarios.

Control

El uso de variedades resistentes es el mejor control de
esta enfermedad (Anexo 1, 2). La mancha foliar por
Pseudocercospora puede ser controlada protegiendo las plantas con
los fungicidas siguientes:

Cuadro 16. Productos recomendados para la
mancha foliar por Pseudocercospora

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Azoxystrobin+Clorotalonil
(¿1?)

Quadris Opti

2-0-2.5 kg

Benomil (1)

Benlate, Blindaje, Funlate

0.5-1.0 kg

5

Clorotalonil (SL)

Daconil 2787 W75, Cheyene 720, Eco 720,
Clorotalonil 75, Bravo 720

1.5-3.0 kg

5

Folpet (2)

Folpan 80 PH

2.5-3.0 kg

25

Mancozeb (5)

Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ, Funcozeb
800, Dithane M45, Manzate Pro Stick, Mancu

1.0-4.0

4

Tiofanato Metílico (SL)

Cercobin M

0.7-1.0

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Tizón por
Choanephora

Choanephora cucurbitarum (Berk. &
Ravenel) Thaxt.

Síntomas

La planta de tomate completa puede ser afectada, si la
temperatura es alta y es muy húmedo. Con frecuencia, las
flores y también las yemas florales son afectadas primero.
Las flores se tornan café o negras y luego se pudren. La
pudrición se extiende hacia abajo rápidamente,
afectando yemas y hojas Foto 17-A). Una pudrición
húmeda definida se desarrolla sobre las partes afectadas;
luego un crecimiento fungoso exuberante característico se
desarrolla sobre la superficie de las pudriciones blandas. Estos
crecimientos parecen cabezas numerosas de alfiler encajadas en un
cojín. Las partes tiernas afectadas cuelgan del tallo. Las
partes infectadas del tallo se muestran acuosas y verdosas y la
cáscara se pela con facilidad de la planta.

Agente causal

Choanephora cucurbitarum tiene micelio blanco,
extensivo y con desarrollo rápido en medio de cultivo;
conidióforos (esporangióforos) largos y ramificados
en el ápice, cada rama llevando una cabezuela de conidias
(esporangiolos); conidias unicelulares, cafés o
púrpuras, elipsoides; esporangios típicos de los
Mucorales también formados en cultivo (Foto 17-B, C,
D).

Desarrollo de la enfermedad

Aunque el hongo produce conidias y esporangios, con
frecuencia solamente las conidias son producidas sobre las
plantas afectadas, El hongo puede sobrevivir como
saprófito en forma de clamidosporas y zygosporas.
Numerosas conidias son producidas sobre las partes afectadas de
las plantas. Ellas son diseminadas por el aire y también
son acarreadas por las abejas y probablemente por muchos otros
insectos que visitan las flores. La infección ocurre a
través de la floración y el hongo se extiende hacia
los frutos y tallos. Ocasionalmente la pudrición se inicia
en otras partes. Los síntomas y estructuras reproductivas
del hongo se hacen evidentes después de 2 a 5 días
de la inoculación. Una alta incidencia de la enfermedad
está correlacionada con períodos de altas
temperaturas, humedad relativa y lluvias excesivas.

Control

Las aplicaciones semanales de los siguientes productos
pueden dar buenos resultados:

Cuadro 17. Productos recomendados para el
tizón por Choanephora

Ingrediente activo

Nombre comercial

Dosis/ha

Tolerancia

en ppm

Azoxystrobin (1)

Amistar 50 WG

300-400 g

0.2

Bacillus subtilis (SL)

Agrobacilo, BaciFol, Probacil, Bio-Logic,
Serenade,

4-6 L

excento

Captafol (SL)

Captafol técnico, Difolatan,

15

Captan (SL)

Captan

1.5-3.0 kg

25

Clorotalonil (SL)

Daconil 2787 W75, Cheyene 720, Eco 720,
Clorotalonil 75, Bravo 720

1.5-3.0 kg

5

Hidróxido cupric (SL)

Hidrocu, Blue Shield, Cupravit Hidro, Kocide
2000

2.5-3.0 kg

Excento

Kasugamicina (14)

Kasumin

1.5-2.0

0.04

Mancozeb (5)

Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ, Funcozeb
800, Dithane M45, Manzate Pro Stick, Mancu

1.0-4.0

4

Oxicloruro de cobre (SL)

Cupravit, Cupertron, Mixcu

2.0-4.0 kg

Excento

Oxicloruro de cobre 39%+ Mancozeb 30%
(5)

Cupravit Mix

Oxido cuproso (SL)

Oxido cuproso

0.8-1.2 kg

Excento

Pyraclostrobin*

Regnum

0.4 L

Sulfato tribásico de Cu
(SL)

Cuperquimm

2.5-3.0 kg

Excento

Trifloxystrobin

Flint

0.5

( )=Días a la cosecha

SL=Sin límite

*Sin registro

Pudrición de
Frutos por Trichothecium

Trichothecium roseum (Pers. ex Fr.)
Link

Trichothecium roseum causa una pudrición
de menor importancia y ocurre esporádicamente en tomates
de invernadero. Generalmente es una enfermedad sin importancia
económica y es reportada por primera vez en
Sinaloa.

El primer síntoma es una lesión
café claro cerca de la unión del pedúnculo
con la fruta. Las lesiones son típicamente radiadas desde
la punta de infección y se desarrolla hasta que se cubre
el fruto completamente. El hongo causa una pudrición firme
de color café oscuro, aunque se pueden desarrollar hongos
y bacterias secundarios que causan una pudrición suave
acuosa de color negro. Posteriormente pueden aparecer conidias
rosadas o anaranjadas. La enfermedad ocurre más
comúnmente en los primeros tres o cuatro racimos (Foto
18).

Trichothecium roseum tiene conidióforos
largos, solitarios, septados, que llevan conidios en el
ápice Los conidios son solitarios o sucesivamente por
desarrollo ligero del ápice del conidióforo,
mantenidos juntos en grupos o cadenas, sin unirse por los
extremos; estas conidias son hialinas o ligeramente coloreadas,
bicelulares, ovoides o elipsoides. Este hongo es saprófito
o parásito débil.

Para su control basta con eliminar los frutos enfermos,
bajar la humedad relativa y no causar heridas a la
fruta.

Moho Negro por
Aspergillus

Asperguillus sp.

Esta enfermedad se presenta esporádicamente, por
primera vez en Sinaloa, en los tomates desarrollados en
invernaderos.

Los daños empiezan en los tallos viejos y en las
heridas producidas por la poda, en donde se observan manchas
oscuras, acuosas, solitarias, que se recubren de un crecimiento
fungoso de color negro, afelpado, que circunda el tallo.
Posteriormente, el follaje que se encuentra por encima de la zona
dañada se marchita. En el invernadero no se ha observado
ataque a los frutos (Foto 19).

Aspergillus sp. tiene conidióforos
rectos, que terminan en un hinchamiento globoso del cual salen
fiálides, en un solo estrato, en forma radiada de toda la
superficie. Las conidias (fialosporas) son unicelulares,
globosas, oscuras en masa, en cadenas basipétalas
secas.

La aplicación de Benlate (benomil), dirigida a la
lesión, puede dar buenos resultados.

Pudrición de
Frutos por Macrophoma

Macrophoma sp.

Es una enfermedad sin importancia y se presenta (por
primera vez, en Sinaloa, en la temporada 2004-2005) durante
periodos de humedad relativa alta. El patógeno empieza
como manchas cafés acuosas que se van agrandando hasta
cubrir el fruto. Sobre la superficie se pueden observar los
cuerpos fructíferos (picnidios) de color oscuro (Foto
20-A). Posterior a la infección, los frutos pueden ser
invadidos por bacterias causantes de pudriciones
suaves.

Macrophoma sp. (Dothiorella o
Botryodiplodia) tiene picnidios oscuros, ostiolados,
globosos, errumpentes; conidióforos simples, cortos o
alongados; conidias hialinas, unicelulares, mayores de 15 micras
de longitud, ovoides o ampliamente elipsoides (Foto 20-B, C,
D).

Bibliografía

Agrios, G. N. 1988. Plant Pathology, 3rd ed. Academic
Press. New York. 803 pp.

Alexopoulus, C.J., Mims, C.W. and Blackwell, M.. 1996.
Introductory Mycology . Fourth Edition. J. John Willey and Sons.
New York 869 pp.

Baiswar, P., Braun, U., Chandra, S. and Ngachan, S.V.
2009. First report of an Oidium sp.
[neolycopersici] on Solanum betaceum in India.
Australasian Plant Disease Notes (4): 32–33

Barksdale, T. H. 1969. Resistance of tomato seedlings to
early blight. Phytopathology 59:443-446.

Barksdale, T. H. 1971. Field evaluation for tomato early
blight resistance. Plant Dis. Rep. 55:807-809.

Barksdale, T. H. 1982. Control of an epidemic of
Septoria leaf spot of tomato by resistance. Plant Dis. 66:
239-240.

Barksdale, T. H. and Stoner, A. K. 1973. Segregation for
horizontal resistance to early blight. Plant Dis. Rep.
57:964-965.

Barksdale, T. H. and Stoner, A. K. 1977. A study of the
inheritance to tomato early blight resistance. Plant Dis. Rep.
67:63-65.

Bashi, E., M. Pilowsky and Rotem, J. 1973. Resistance in
tomatoes to Stemphylium floridanum, and S.
botryosum
f. sp. lycopersici. Phytopathology
63:1542 1544.

Bashl. E., Y. Ben Joseph and Rolem, J. 1982. Inoculum
potential of Phytophthora infestans and the development
of potato late blight epidemics. Phytopathology
72:1043-1047.

Basu, P. K. 1971. Existence of chlamydospores of
Alternaria porri f. sp. solani as overwintering
propagules in soil. Phytopathology 67:1347-1350.

Basu, P. K. 1974. Measuring early blight, its progress
and influence on fruit losses in nine tomato cultivars. Can. PI.
Dis. Survey 54:45-51.

Basu, P. K. 1974. Reduction of primary infection of
tomato early blight by fall fumigation of soil with Vorlex. Can.
PL Dis. Survey 54:24-25.

Blasquez, C. H., and S. A. Alfieri, Jr. 1974. Cercospora
leaf mold of tomato. Phytopathology 64:443-445.

Blazquez, C. H., y Alfieri, S. A., Jr. 1974. Cercospora
leaf mold of tomato. Phytopathology 64: 443-445.

Bond, O. C. 1935. Evidence of the seed borne nature of
late blight Phytophthora infestans of tomatoes.
Phytopathology 2.5:7.

Braun, U. 1980: The genus Leveillula a
preliminary study. Nova Hedwigia, 32:
565:583.

Bruck, R. 1. Fry W. E., Apple A. E. and Mundt, C. C.
1981. Effect of protectant fungicides on the developmental stages
of Phytophthora infestans in potato foliage.
Phytopathology 71:164-166.

Butler, E. E. 1959. Fungi and rots in California canning
tomatoes. Plant Dis. Rep. 53:87.

Channon, A. G. and Thomson, M. C. 1977. Studies on the
fungicidal control of stem lesions caused by Botrytis
cinerea
on glasshouse tomatoes. Ann. Appl. Biol.
85:359-368.

Chastagner, G. A. and Ogawa, J. M. 1978. Dispersal of
conidia of Botrytis cinerea in tomato fields.
Phytopathology 68:1171-1176.

Coffey, M. D., R. Whitbread and Marshall, C. 1975. The
effect of early blight disease caused by Alternaria
solani
on shoot growth of young tomato plants. Ann. Appl.
Biol. 80:17-26.

Cohen, Y. y Grinberger, M. 1987. Control of metalaxyl
resistant causal agents of late blight in potato and tomato and
downy mildew in cucumber by cymoxanil. Phytopathology 77:
1283-1288.

Cohen, Y. M. Reuveni and Eyal H. 1979. The systemic
antifungal activity of Ridomil against Phtytopthora
nfestans
on tomato plants. Phytopathology
60:645-649.

Cook, H. T. 1949. Forecasting late blight epiphytotics
of potatoes and tomatoes. Jour, Agr. Res. 78:545-563.

Correll, J. C. Gordon, T. R. Elliott, V. J. 1988:
Powdery mildew of tomato: the effect of planting date and
triadimefon on disease on set, progress, incidence and severity.
Phytopathology, 78: 512-519.

Correll, J. C., Gordon, T. R. y Ellioit, V. J. 1987,
Host range, specificity, and biometrical measuremems of
Leveillula taurica in California. Plant Dis.
71-248-251.

Date H, Kataoka E, Tanina K, Sasaki S, Inoue K, Nasu H,
Kasuyama S (2004). Sensitivity of Corynespora cassicola,
causal agent of Corynespora target spot of tomato, to thiophanate
methyl and diethofencarb.Japanese Journal of
Phytopathology
70, 7-9

DeBruyn, H. L. G. 1926. The overwintering of
Phytophthora infestans (Mont.) de Bary. Phytopathology
6:121-140.

Dickens, J. S. W. and Evans, S. G. 1973. A
Stemphylium leaf blight of tomato. Plant Path.
22:70-72.

Douglas, B. 1922. A new Alternaria spot of tomatoes in
California. Phytopathology 12:146-148.

Easton, G. D. 1982. Late blight of potatoes and
prediction of epidemics in arid central Washington state. Plant
Dis. 66:452-455.

Ewin, D. C. Bartnicki-Garcia, S. Tsao, P. H. 1983.
Phytophthora its Biology, Taxonomy, Ecology and
Pathology. The American Phytopathological Society, 391
pp.

Ferrer, J. B. and J. H. Owen. 1959. Botrytis
cinerea
the cause of ghost spot disease of tomato.
Phytopathology 49:411-417.

Fletcher, J. T. Smewin, B. J. Cook, R. T. A., 1988:
Tomato powdery mildew. Plant Pathology, 37: 594-598.

Fournet, J. 1971. Study on the conditions for infection
of tomato leaves by Phoma destructiva Plowr. Annu. Rev.
Phytopathol. 31: 215-231.

Gardner, M. W. 1925. Cladosporium leaf mold of tomato:
Fruit invasion and seed transmission. Agric. Res. (Washington D.
C.) 31: 519-540.

Gilchrist. D. G. y Grogan, R. G. 1976. Production and
nature of a host specific toxin from Alternaria
alternata
f. sp. lycopersici. Phytopathology 66:
165-171.

Glasscock, H. H. y Ware, W. M. 1944. Alternaria blight
of tomatoes. J. Minist. Agric. (G. B.) 51: 417-420.

Grogan, R. G., Kimble. K. y Misaghi, 1. 1975. A stem
canker disease of tomato caused by Alternaria alternata
f. sp. Lycopersici. Phytopathology 65:
880-886.

Groves. I. W. y Skolko, A. J. 1944. Notes on seedborne
fungi. II. Alternaria. Can. J. Res: 22:
217-234.

Gunther, E., Eggert, D. and Grummer, G. 1970. Resistance
of tomatoes to late blight (Phytophthora infestans).
Ann. Appl. Biol. 65:255-262.

Hannon, C. L. and Weber, G. F. 1955. A leaf spot of
tomato caused by a new Stemphylium sp. Phytopathology
45: 11-16.

Harrison, K. A. 1961. The control of late blight and
gray mold in tomatoes in Nova Scotia. Can. Pl. Dis. Survey
41.-175-178.

Henning, R. G. and Alexander L. J. 1959. Evidence of
existence of physiologic races of Alternaria solani.
Plant Dis. Rep.:298-308.

Holliday, P. and Mulder J. L. 1976. Fulvia
fulva.
CMl. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria.
No. 487. 2 pp. CMl Kew, Surrey. England.

Horsfall, J. G. and Heuberger, J. W. 1942. Causes,
effects and control of defoliation on tomatoes. Conn. Agr. Expt.
Sta. Bull. 456:182-223.

Hyre, R. A. 1954. Progress in forecasting late blight of
potato and tomato. Plant Dis. Rep. JS.-245-253.

Jarvis, W. R., Slingsby, K., 1977: The control of
powdery mildew of greenhouse cucumber by water sprays and
Ampelomyces quisquatis. Plant Dis. Reptr., 61:
728-730.

Jaworski, C. A., Glaze, N. C. Ratcliffe, T. J. y
Flowers, R. A. 1977. Late blight in mature tomatoes and
transplants in southern Georgia in 1976 and possible chemical
control. HortScience 12: 553-555.

Jones, H., Whipps, J.M. and Gurr, S.J. 2001. The tomato
powdery mildew fungus Oidium neolycopersici. Molecular
Plant Pathology (6): 303-309

Jones, J. P. 1973. Evaluation of some fungicide
treatments for phytotoxicity to tomato and control of late blight
and leafmold. Plant Dis. Rep. 57: 612-614.

Jones, J. P. 1978. Disease thresholds for downy mildew
and target leaf spot of cucurbits and late blight of tomato.
Plant Dis. Rep. 62: 798-802.

Jones, W. B, Tmomhson, S. V. 1987. Source of inoculum,
yield, and quality of tomato as afected by Leveillula
taurica.
Plant Disease, 71: 266-268.

Koniaxis, D. G. y VanMaren, A. F. 1978. Powdery mildew
on tomato a new disease in the United States. Plani Dis. Rep.62:
892-893.

Lukens, R. J., and Ou S. H. 1976. Chlorothalonil
residues on field tomatoes and protection against Alternaria
solani.
Phytopathology 66:1018-1022.

Partes: 1, 2, 3
 Página anterior Volver al principio del trabajoPágina siguiente 

Nota al lector: es posible que esta página no contenga todos los componentes del trabajo original (pies de página, avanzadas formulas matemáticas, esquemas o tablas complejas, etc.). Recuerde que para ver el trabajo en su versión original completa, puede descargarlo desde el menú superior.

Todos los documentos disponibles en este sitio expresan los puntos de vista de sus respectivos autores y no de Monografias.com. El objetivo de Monografias.com es poner el conocimiento a disposición de toda su comunidad. Queda bajo la responsabilidad de cada lector el eventual uso que se le de a esta información. Asimismo, es obligatoria la cita del autor del contenido y de Monografias.com como fuentes de información.

Categorias
Newsletter